miRNA-29c 在喉癌组织中的表达及对喉癌Hep-2 (3)
<0.01);这表明miRNA-29c 可在体外显著抑制Hep-2细胞的增殖生长及侵袭能力。
综上所述,在喉癌中miRNA-29c 是一个抑制性miRNA,过表达miRNA-29c 可以显著抑制喉癌Hep-2 细胞的恶性生物学行为,如喉癌Hep-2 细胞的增殖及侵袭能力。 miRNA-29c 可能参与喉癌的发生、发展、侵袭和转移。 其作用机制探讨将成为本课题组下一步研究的方向,阐明这些机制也将更有助于miRNA-29c 介导的生物靶向治疗作为一种新型的诊疗技术应用于喉癌的临床治疗及预后判断。
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喉癌是头颈部肿瘤中常见的恶性肿瘤,相当一部分晚期喉癌的5 年生存率仅有大概51%[1]。 微小RNA(MicroRNA,miRNA) 是当前研究热点和前沿之一[2]。miRNA 可通过调节下游基因的表达和功能参与生命活动的调节,如凋亡、增殖及分化,发挥类似癌基因或抑癌基因的作用[3-5]。 最新研究显示,miRNA-29c 表达异常减少是导致一些恶性肿瘤细胞无限增殖及肿瘤发生、发展的重要因素[6-8]。 但暂时未见与喉癌的相关的报道。 本研究检测miRNA-29c 在喉癌及癌旁组织中的表达,并探讨其与临床病理特征的关系及对肿瘤预后的影响。 此外以喉癌细胞系Hep-2 为研究对象,瞬时转染技术提高了Hep-2 细胞中miRNA-29c 的表达水平,观察miRNA-29c 对喉癌Hep-2 细胞增殖和侵袭的影响。1 材料与方法1.1 材料来源选取 2006 年 1 月~2016 年 12 月在我院耳鼻喉科经手术切除的喉癌患者的蜡块标本86 例作为喉癌实验组,同时,将42 例石蜡包埋的癌旁正常喉黏膜上皮组织作为对照组。 86 例喉癌患者中,男79 例,女7 例,年龄 47~82 岁,平均(62.)岁,所有患者在手术前均未接受放化疗或其他治疗 细胞及试剂人喉鳞Hep-2 细胞株购买于中国科学院上海细胞研究所。 RPMI-1640 培养基及胎牛血清(Gibco 公司),CCK-8 试剂盒(Bryotime 公司),核糖核酸试剂盒Trizol 及细胞转染试剂 Lipofectamine2000(Invitrogen公司);Real MasterMix(SYBR Green)荧光定量PCR 试剂盒 (Tiangen 公司);Transwell 小室 (Corning公司);Matrigel Basement Membrane Matrix(BD 公司);miRNA-29c 模拟物(miRNA-29c mimics)及无关序列(negetive control,NC)由 Ribobio 合成 方法1.3.1 Hep-2 细胞培养 将人喉癌Hep-2 细胞接种于6 孔板,用含有10%胎牛血清的RPMI-1640 培养基进行培养,条件是37℃、含5% CO2。 实验分为三组:miNRA-29c mimics 组(miRNA-29c 模拟物+Lipo2000);NC 组(NC+ Lipo2000);mock 组(正常空白对照 细胞转染并检测转染效率 待Hep-2 细胞株的生长密度达到约80%时,根据LipofectamineTM2000的操作说明书,使用Lipo 2000 分别将miRNA-29c 模拟物和无关序列NC 转染至Hep-2 细胞。 转染Cy3-NC 24 h 后,利用荧光显微镜观察转染效率并拍照 Q-RT-PCR 用于检测喉癌标本及癌旁组织中mRNA-29c 的表达量 将每个蜡块样品切成10 μm厚的切片,并取5 个切片提取总RNA。 根据Trizol 说明书的方法,进行细胞的总RNA 的提取,并利用紫外分光光度计测A260/A280。通过逆转录合成cDNA,并将合成的cDNA 稀释10 倍。 按如下条件进行PCR 反应:预变性 95℃ 30 s,变形 95℃ 5 s,退火延伸 60℃30 s, 扩增 40 个循环。 记录每个孔的 CT 值, 并取 3个孔的平均值作为结果,以U6 为内参基因,并采用2-△△Ct 法计算miRNA-29c 的相对表达量,每个样本独立重复实验3 次 Q-RT-PCR 检测 3 组细胞中 mRNA-29c 的表达量 将每组Hep-2 细胞转染48 h,按照Trizol 说明书方法提取细胞总RNA,具体实验步骤同1.3.3。 miRNA-29c 和U6 引物序列见表1。表1 miRNA-29c 和 U6 引物序列名称 引物序列(5’→3’)miRNA-29c U6上游引物:CTGACCTTAGCACCATTTGAAATC下游引物: TATCGTTGTACTCCACTCCTTGAC上游引物:ATTGGAACGATACAGAGAAGATT下游引物: CCK-8 检测Hep-2 细胞增殖能力的变化 在不同的96 孔上接种细胞悬液,均设5 个重复孔,再进行细胞转染。 培养48 h 后于每孔中加入10 μL 的CCK-8 溶液,培养箱中孵育2 h,用酶标仪测定每孔的吸光值(A 值),检测波长为 450 nm,A 值越高,表明活细胞数越多,细胞增殖活性也就越高 Transwell 法检测Hep-2 细胞侵袭能力的变化Matrigel 基质胶利用无血清1640 培养基稀释,浓度为50 mg/L,以 50 μL 的体积加入 Transwell 小室的上室。37℃放置 30 min。分别将 3 组细胞(2.0×105个/L)的悬液200 μL 加入Transwell 细胞培养小室的上室, 置于37℃、5%CO2孵箱培养24 %结晶紫染色30 min,自来水洗净后,用湿棉试子除去聚碳酸酯膜上表面的细胞,在倒置显微镜下直接观察穿过膜的细胞。最后,在33%醋酸中洗涤细胞小室,利用紫外分光光度测量570 nm 处的A 值,独立重复实验3 次,取平均?统计学处理统计分析利用 SPSS19.0 软件,GraphPad Prims 8.0 软件绘制统计图。 计量资料以均数±标准差()表示,组间两两比较采用LSD-t 检验,以P<0.05 表示差异有统计学意义。2 结果2.1 miRNA-29c 在喉癌组织及癌旁组织中的表达情况Q-RT-PCR 结果显示,miRNA-29c 在喉癌组织及癌旁正常喉黏膜上皮组织中的表达水平分别为(0.)、(0.),miRNA-29c 在喉癌组织中的表达明显低于癌旁组织,差异有统计学意义(t=13.96,P<0.01)。 见图 1。图1 miRNA-29c 在喉癌和癌旁组织中的表达情况2.2 miRNA-29c 表达与喉癌临床病理的关系miRNA-29c 的表达水平与患者临床分期、T 分期及淋巴转移密切相关(P<0.05),而与患者的性别、年龄、吸烟、分型及分化程度无关(P>0.05)。 见表 2。表2 miRNA-29c 的表达与喉癌各临床病理参数的关系()临床病理参数 n miRNA-29c表达水平 t 值 P 值性别男女79 7 0. 0.年龄(岁)≤60>60分化程度高中分化低分化临床分期Ⅰ期+Ⅱ期Ⅲ期+Ⅳ期分型声门上声门声门下T 分期T1+T2 T3+T4淋巴结转移 39 47 0. 0. 56 30 0. 0. 54 32 0. 0. 23 60 3 0. 0. 0. 2.4370.041 55 31 0. 0. 无有72 14 0. 0.吸烟无有37 49 0. 0. 检测细胞转染效率Hep-2 细胞经带有Cy3 荧光蛋白的无关序列(Cy3-NC)转染24 h,在荧光显微镜下观察转染率,转染效率约90%(封三?Q-RT-PCR 检测 miRNA-29c 在 Hep-2 细胞中的表达情况Q-RP-PCR 结 果显 示,miRNA-29c mimics 组 、NC 组和空白对照组中miRNA-29c 的表达水平分别为(17.)、(1.)、(1.)。结果表明,转染miRNA-29c mimics 的Hep-2 细胞与NC 组及空白对照组相比,miRNA-29c 的表达水平显著升高(P<0.01)。 转染 miRNA-29c mimics 可以明显上调 Hep-2细胞的miRNA-29c 表达水平 转染miRNA-29c 对Hep-2 细胞增殖的影响CCK-8 测定的结果显示(封三图 2),miRNA-29c mimics 组、NC 组和空白对照组的 A 值分别为(0.)、(0.)、(0.)。 结果表明,NC 组和空白对照组细胞增殖能力明显高于转染miRNA-29c mimics 后的 Hep-2 细胞,差异有统计学意义(P<0.01),NC 组和空白对照组相比细胞增殖无明显差异(P>0.05)。转染miRNA-29c mimics 能抑制Hep-2 细胞的增殖活性(封三?miRNA-29c mimics 转染对Hep-2 细胞侵袭力的影响Transwell 体外侵袭实验结果显示,miRNA-29c mimics 组、NC 组和空白对照组的穿膜细胞数分别为(0.)、(0.)、(0.)。 结果表明,转染miRNA-29c mimics 后,Hep-2 细胞侵袭能力显著低于NC 组及空白对照组,差异有统计学意义(P<0.01),NC 组和空白对照组间侵袭能力差异无统计学意义(P>0.05)。 见封三图 4。3 讨论近年来研究发现,恶性肿瘤发生发展与细胞内各种基因突变相关,并且与表观遗传调控网络的紊乱密切相关。 miRNA 作为表观遗传调控网络的重要组成部分,它的发现为肿瘤的诊断治疗研究提供了新的方向, miRNA 的表达具有明显的组织特异性,其表达紊乱可能和许多肿瘤的发生发展相关。 近年来,许多研究表明,miRNA 的异常表达与喉癌的增殖、 分化、浸润和转移等生物学行为密切相关[9-12]。深入研究miRNA 与喉癌发生发展的关系, 将为生物学治疗喉癌提供有力的理论指导。 既往研究表明,miRNA-23a[13]、miRNA-16[14]在喉癌组织中表达异常,这说明miRNA 与喉癌的发生发展密切相关。因此,深入研究miRNA 在喉癌中的表达对其临床诊疗具有重要意义。 miRNA-29c 是Yu 等[15]最早在血液系统疾病中发现其与疾病相关,之后诸多文献报道miRNA-29c 参与如膀胱癌[16]、子宫内膜癌[17]、黑色素瘤[18]等疾病的发生发展过程。 一项针对110 例患者长达平均72 个月的随访发现miRNA-29c 可作为慢性淋巴细胞白血病的预后指标,但尚未进行功能研究[19]。 Pass等[20]也证明miRNA-29c 可评估恶性胸膜间皮瘤独立的预后情况,并通过细胞实验证实随着miRNA-29c的表达增加、肿瘤细胞的增殖、侵袭、迁移和克隆生长降低。 国内代大伟等[21]通过转染miRNA-29c 提高胶质瘤U251 细胞内miRNA-29c 表达量,并通过MTT实验证实,过表达miRNA-29c 可抑制细胞增殖能力。实验组细胞的凋亡比例明显升高,同时侵袭能力明显下降,提示miRNA-29c 可能具有抑制脑胶质瘤细胞侵袭和促进肿瘤细胞凋亡的作用。 miRNA-29c 在肿瘤中发挥如此重要的作用,但是在喉癌中的功能却未见报道。本研究通过 Q-RT-PCR 检测 miRNA-29c 在 86例喉癌组织和42 例癌旁组织中的表达情况。 结果发现喉癌中miRNA-29c 的表达水平明显低于正常组织,研究还发现临床分期越晚,分化程度越低或伴有淋巴结转移患者喉癌组织中miRNA-29c 的表达水平也相对较低,miRNA-29c 的低表达对肿瘤预后有不利影响,它是喉癌患者预后不良的重要危险因素。 为了进一步探讨将miRNA-29c 用于喉癌生物靶向治疗的可能性,以喉癌Hep-2 为研究对象,通过转染miRNA-29c mimics 来进行一系列的研究。 通过荧光显微镜观察发现Lipo2000 瞬时转染法的转染效率约为90%;Q-RT-PCR 实验结果显示,转染模拟物后miRNA-29c 的表达上调了10 倍以上,表明转染的效果显著;CCK-8 及Transwell 体外侵袭实验结果表明,转染miRNA-29c 后Hep-2 细胞的增殖、 侵袭能力受到明显抑制,较NC 组及空白对照组有显著差异(P<0.01);这表明miRNA-29c 可在体外显著抑制Hep-2细胞的增殖生长及侵袭能力。综上所述,在喉癌中miRNA-29c 是一个抑制性miRNA,过表达miRNA-29c 可以显著抑制喉癌Hep-2 细胞的恶性生物学行为,如喉癌Hep-2 细胞的增殖及侵袭能力。 miRNA-29c 可能参与喉癌的发生、发展、侵袭和转移。 其作用机制探讨将成为本课题组下一步研究的方向,阐明这些机制也将更有助于miRNA-29c 介导的生物靶向治疗作为一种新型的诊疗技术应用于喉癌的临床治疗及预后判断。[参考文献][1] Gorphe P,Tao Y,Blanchard P,et al. 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文章来源:《中国微侵袭神经外科杂志》 网址: http://www.zgwqxsjwkzz.cn/qikandaodu/2021/0120/408.html
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